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临床检验标本采集和处理必须重视(4)

时间:2010-04-05 10:33来源:收集整理 点击:

5.不论是抗凝血还是非抗凝血,为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间,以避免由此而影响结果的准确性,血液标本收集后,都必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。从血液标本采集开始,必须在2h内将全血处理为血清或血浆。
(1)血清(非抗凝血):采血后标本必须颠倒混合5~10 次,22~25ºC(室温)15~30min后可自行(自发)完全凝固,禁用木棍和玻棒等剥离凝块;冷藏标本凝集较慢,加促凝剂时凝集加快。
(2)血浆(抗凝血):应采用抗凝管采血,采血后立即颠倒混合5~10次,采血后数min内可离心分离血浆。
(3)冷藏标本:用于稳定血液中温度依赖性成分的(抑制细胞代谢),标本于2-8ºC冷藏(标本采集后立即置冰屑或冰水混合物中,冷藏必须充分);标本需冷藏的测定项目有:儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。,全血标本一般不冷藏,血钾测定标本冷藏不得>2h
(4)代谢抑制剂和防腐剂的应用:用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后,血细胞未分离情况下血标本中Glu,22~25ºC稳定24h,2~8ºC稳定48h;氟化钠不适用于新生儿及儿童的Glu测定(因儿童PCV高,细胞糖酵解难以控制);氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测(因氟化钠-麝香草酚混合剂能抑制酶活性);甲醛—草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。
(5)实验室离心标本的准备:不主张用小棍强行剥离凝血块(诱发溶血);必须剥离时应动作轻柔;真空采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆。
6.关于标本离心(指标本处于离心机里的一段时间)
(1)离心时间和相对离心力:离心时间为5~10min;相对离心力(RCF)为1000~1200×g;
(2)温度控制离心:离心时产热,不利于分析物稳定。温度依赖性分析物(ACTH﹑环腺苷酸﹑儿茶酚胺等)离心温度应控制在4ºC;无特殊温度要求的分析物离心温度在20~22ºC;冷藏运送标本应利用温度控制离心机离心。
(3)再离心:最好一次完成标本离心。普通采血管二次离心时必须在首次离心后短
时间内完成;带分离胶的采血管不可以二次离心。
7.离心后标本处理(指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出 一定量之前)
(1)血清/血浆与接触的细胞/凝块应于采集后2h内尽快分离;
(2)分离出的血清或血浆的储存:①8h内可以储藏于22ºC,8h以上储藏于2~8ºC
48h以上储藏于-20ºC;② 标本不可反复冻融(只能一次,且不可储藏于无霜冰箱);③分离胶上面的血清或血浆,可保存2-5天;④用非凝胶分离物质时,离心后必须立即移开血清或血浆;⑤ 血清或血浆必须密闭保存(置于带塞或封口的试管中)。

血气分析标本
    血气分析标本为动脉(股﹑肱﹑挠动脉)抗凝全血,抗凝剂为肝素钠(0.05mg/ml,即1000u/ml,用9g/L的生理盐水配制)。标本采集注意事项为:
1.采血一定要用厌氧技术(让血液尽量少的与空气接触);
2.采血前先吸入足够量液体肝素抗凝剂于注射器内,使其尽可能湿润注射器内壁,然后排出液体肝素,留下注射器死区内液体肝素约0.1ml即可;3.采血量0.5~1.0ml(最好2.0ml);
4.抽出的血液不能有气泡,如有气泡应立即排出;
5. 标本采好后立即封闭注射器针头,用两手挫动注射器针筒使标本混匀后立即送检。微生物学检验标本
微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理,与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系;对可疑烈性呼吸道传染病(如SARS ﹑炭疽﹑肺鼠疫等)患者采集标本时,必须按国家规范化要求严格注意生物安全;医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题,并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。
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