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血流感染的发生发展可以严重威胁患者的生命，其正确诊断不仅可以减少抗菌药物的误用和滥用，同时可以大大地改善患者的预后，降低患者的病死率，减少医疗花费。本文向读者详细介绍血培养标本采集时间、套数、血量要求、样本运输、皮肤消毒注意事项、导管相关性血流感染以及感染性心内膜炎诊断规范、快速鉴定血培养中的念珠菌、MRSA、葡萄球菌等新方法。提醒广大医务工作者严格执行血流感染的诊断规范，快速报告实验结果，强调实验室及时与临床沟通，提高血流感染诊断水平的重要意义。
1、采血时间
研究表明，细菌大量入血的时间为患者寒颤发热前1小时，在此期间，应同时（或间隔30-60 min）采集2-3套血培养，只有在怀疑患者有感染性心内膜炎或其它血管内感染（如导管相关性感染）时，才有必要间隔较长时间多次采集血培养。
2、血培养数量
在每次败血症期间，推荐采集2-3套血培养。对于成人，不应仅做1套血培养，不仅因为采血量不足，而且1套血培养的结果较难解释。由于在开始抗菌治疗后，患者血液中的致病菌不会立即清除，2-5天内无须重复进行血培养。但对于感染性心内膜炎患者，应多次进行血培养以评估和指导治疗；由金葡球菌引起的败血症（非感染性心内膜炎），应在48-96 小时重复培养以判断其是否为复杂性金葡菌败血症。
3、血培养采血量
采血量对于败血症的检测非常重要。对于成人，采血量在2-30 ml 时致病菌的检测与血量成正比，虽然采血量增长至40 ml（甚至更高）时血培养阳性率仍在提高，但已经不再与采血量成正比。对于婴幼儿，采血量不应超过患儿总血量的1%。
4、血标本在需氧瓶和厌氧瓶间的分配
在常规血培养中，推荐成对使用需氧瓶和厌氧瓶。如果采血量低于推荐血量，应将血标本先注入需氧瓶，再将剩余血液注入厌氧瓶，因为大部分败血症是由需氧或兼性细菌及酵母菌引起的。如果仅做需氧培养，每套培养应使用2个需氧瓶并保证有足够的血量。
5、皮肤消毒以避免污染
为减少皮肤菌群对血培养的污染，应对静脉穿刺点进行消毒。研究表明碘酊、过氧化氯和葡萄糖酸洗必泰优于聚维酮碘，碘酊与葡萄糖酸洗必泰效果相近。碘酊应作用30 s，碘伏应作用1.5-2 min。葡萄糖酸洗必泰也应作用30 s，它较少引起过敏，因而在静脉穿刺后不需擦掉，但不能用于2个月以内的新生儿皮肤消毒。
6、血培养采集和运输
血标本采集应严格遵守无菌操作，从静脉采血。留置导管血通常比静脉穿刺血培养污染率高。若分析导管相关性感染，应在采集导管血的同时，静脉穿刺采集外周血进行对比。如果从静脉管道采血，不需要弃去开始段的血液，也不需要使用生理盐水冲洗管道以消除抗凝剂，因为其抗菌作用通常可以被培养基有效稀释消除。
静脉穿刺点选定后，去除血培养瓶的瓶帽，使用70%异丙醇消毒待干，然后再对静脉穿刺点消毒，先使用70%异丙醇消毒，自然干燥后，再使用相应消毒剂作用足够时间。采血人员除非佩戴无菌手套，在患者皮肤消毒后不得触碰其静脉。血液注入血培养瓶前更换针头对于污染率的减少作用甚微，且易引发针刺伤。血标本注入血培养瓶后应轻轻翻转数次，以免凝血。无论使用什么方法采集血培养，应尽量减低血培养的污染率至≤3%。
血培养瓶应在2小时内送至实验室，延迟上机会延缓甚至阻碍病原菌生长。培养瓶在室温仅能存放数小时。切忌将培养瓶冷藏或冷冻，冷藏或冷冻会导致部分病原菌死亡，冷冻可能导致培养瓶破裂。
7、血培养标本拒收原则
标识错误或没有标识的培养瓶；破损或渗漏的培养瓶；凝血。
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